摘要:斑马鱼因产卵量大、体外受精、体外发育、胚胎透明等优势被广泛应用于生命科学等各类研究领域。了解斑马鱼的生活和繁殖习性,掌握斑马鱼自然交配产卵技术,收集充足数量的受精卵是顺利开展各种斑马鱼相关实验的先决条件。
关键词: 斑马鱼, 自然交配, 产卵, 传代
材料与试剂
- 配种缸(上海海圣,货号:HS022)
- 90 mm培养皿(海门,货号:HC030)
- 3 mL塑料吸管(海泰,货号:HC001)
- 鱼捞(上海海圣,货号:HS018)
- 鱼卵捞网(上海海圣,货号:HS019)
- 性成熟雌、雄斑马鱼
- 8%次氯酸钠溶液(3A,catalog number: A04633)
- 亚甲基蓝(Meryer,catalog number: F70013)
- NaCl(国药,货号:10019318)
- KCl(国药,货号:10016318)
- MgSO4(国药,货号:20025118)
- KH2PO4(国药,货号:10017608)
- Na2HPO4(国药,货号:10020318)
- CaCl2(国药,货号:10005861)
- NaHCO3(国药,货号:10018960)
- 胚胎养殖水(见溶液配方)
100× E2A储存液
500× E2B储存液
500× E2C储存液 - 胚胎消毒储存液(6%次氯酸钠)(见溶液配方)
- 亚甲基蓝储存液(5 g/L)(见溶液配方)
仪器设备
- 斑马鱼循环养殖系统(ESEN, model: AW-RC12)
- 体视显微镜(olympus, model: SZ2-LGB)
- 恒温培养箱(精宏,型号:HWS-080,中国)
实验步骤
斑马鱼(Danio rerio),英文名称zebrafish,属硬骨鱼类,辐鳍鱼纲(Actinopterygii),鲤形目(Cypriniformes),鲤科(Cyprinidae),鲐属(Danio),原产于印度及孟加拉国的淡水水域,为杂食性热带淡水鱼类(Kimmel, 1989; Engeszer et al., 2007)。因其具有体型小、易于养殖、繁殖周期短、发育迅速、产卵量大、体外受精、体外发育、胚胎透明、基因组与人类同源性高等优势 (Xie et al., 2015; Viets et al., 2016),近20年来斑马鱼被广泛应用于遗传学 (Davis et al., 2014)、发育生物学 (Driever et al., 1996; Haffter et al., 1996)、神经生物学 (Stewart et al., 2014)、再生和干细胞研究 (Gemberling et al., 2013)、疾病模型和药物筛选 (Rennekamp and Peterson, 2015)、环境毒理学 (Dai et al., 2014)等科研领域。
斑马鱼成体雌鱼为蓝色与银灰色相间条纹,体态丰满,腹部膨大银亮;成体雄鱼为蓝色与柠檬色相间条纹,身材修长,腹部扁平,臀鳍根部略显金黄。斑马鱼的适宜生长温度为20-30 °C,实验室常用养殖水温为25-28 °C,观察胚胎发育进程的标准养殖温度为28.5 °C。因斑马鱼在生理和行为学上呈现出明显的昼夜节律,光暗周期的变化可直接启动其生物节律进而影响斑马鱼的产卵交配,故斑马鱼养殖环境中稳定的光周期对于配鱼产卵的成功至关重要。斑马鱼常用光照周期为14小时明/10小时暗周期 (王明勇,黄国栋,王晗, 2012),每个明周期开始后3小时内为繁殖产卵活跃期。斑马鱼的自然寿命约3到5年,实验室环境下性成熟期约为3个月,而6至18月龄的斑马鱼繁殖能力较强。在合适的饲养条件下,成年斑马鱼全年皆可交配产卵,两次产卵仅需间隔一周,一对健康的成年斑马鱼一次交配可产卵200枚以上。所产卵为非黏性卵,直径约为1 mm,沉积于缸底(Brown et al., 2016)。下文将详细介绍实验室内斑马鱼的自然繁育过程。
- 实验前准备
- 为提高斑马鱼的产卵量,应在交配前1至2周对雌雄成鱼增添活饵料投喂。长期规律地用于产卵的成鱼应坚持每日2次以上活饵料饲养。
- 配鱼产卵的前一天应准备装有养殖水的配种缸,水量约占配种缸体积的三分之二。配种前对鱼进行投喂。配种缸由内缸、外缸、隔板、盖板四部分组成,外缸盛水可保障鱼适宜生存环境;内缸下方为镂空结构,便于鱼卵下沉,可阻止亲鱼接触吞掉鱼卵;隔板分离成年雄雌鱼,防止雌雄鱼接触过早相互攻击或者提前接触产卵;盖板放置于配种缸顶部,防止鱼跳出(图1)。
图1. 配种缸内挡板隔开的雌雄鱼(隔板右侧是1尾雄鱼,左侧是2尾雌鱼)
- 斑马鱼的选取与配鱼
- 成年雌雄鱼鉴别:相同饲养条件下,同龄成年雌鱼体型比雄鱼稍大,腹部也更膨大。但是由于卵巢孕育鱼卵的情况不同,雌鱼的腹部也可能相对扁平;而雄鱼在刚刚摄食或腹腔生长肿瘤等情况下也可能腹部膨大,因此观察体型只能对分辨雌雄鱼起到辅助作用。在实验中更推荐使用观察体色的方式来判断雌雄鱼。雌鱼的条纹偏银色,腹部膨大银亮,体型丰满;雄鱼体型修长,条纹为柠檬黄,臀鳍根部呈现金黄色(图2)。
- 下午投喂一小时后,将成年雌、雄鱼按照1:1或2:1比例放入准备好的配种缸内,密度不易过高(常规0.8L配种缸内不应放置超过4尾鱼),雌雄鱼用隔板分开,并盖上顶部盖板(图1)。
- 将配种缸放置在鱼房养殖环境下,按照斑马鱼日常作息规律,放置过夜。
图2. 成年野生型(AB品系)斑马鱼。图片上方为雄鱼,体型修长,体色为柠檬色,腹部扁平。图片下方为雌鱼,体型丰满,腹部膨大,体色银灰。同龄雌鱼较雄鱼体型略大。
- 自然交配与鱼卵收集
- 次日早上按照鱼房正常光周期给予光照,并给配种缸内斑马鱼换水。明周期开始后的半小时内,雌雄鱼会出现明显的相互吸引行为,频繁接近隔板,在隔板附近区域游动。此时抽取隔板,雌雄鱼会迅速开始彼此接触,并可能产卵。明周期开始后三小时左右,如仍未抽取隔板让雌雄鱼接触,则雌鱼可能开始将卵巢内的卵子逐渐降解吸收。此后,即便给予雌雄鱼接触机会,交配产卵的成功率会大大降低。因此,收集鱼卵的最佳时间段为明周期开始后的30分钟之内,如需要延迟收集受精卵,最多不要超过明周期开始之后的3小时。换水方式为:准备另一外缸,加入新鲜养殖水至体积的三分之一,将内缸(内有斑马鱼)转移至其中。
抽取隔板使雌、雄鱼接触,雌、雄鱼在明周期开始后很快出现追逐行为,并开始交配产卵(视频1)。交配期间,尽量避免干扰。原缸水体经鱼过夜排泄废物,氨氮含量可能过高,换水可以降低水体氨氮含量,保持水体清洁度,同时适量减少缸内水量,水层浅有助于雌雄鱼交配产卵。如为了试验需要,例如进行显微注射期间,为了保证收集的受精卵处于1-2细胞期,则可通过控制抽取隔板的时间,或更换外缸等方式,保证试验期间都可收集到合适年龄的受精卵。
视频1. 斑马鱼的自然交配产卵
- 待亲鱼产卵后,鱼卵会沿配种内缸底部缝隙沉积于外缸底部。产卵一定时间后,可以把亲鱼再换置到一缸干净养殖水内,亲鱼可能会继续产卵。产卵结束后,开始收集配种缸内的鱼卵。将外缸内的水缓慢倒入鱼卵捞网,鱼卵会被收集在捞网中,之后用胚胎养殖水清洗鱼卵2~3次,清洗过程中用吸管弃掉粪便、死卵等杂质。
- 放置鱼卵到装满胚胎养殖水的平皿内,在28.5 °C恒温培养箱内养殖,可无光照培养,但如条件允许或从事与生物节律有关的科研工作,培养箱与成鱼养殖环境的光周期保持一致或根据实验需要进行调节。对于直径为90 mm的培养皿,鱼卵养殖密度在50颗/皿为宜。
- 在培养皿外贴上标签,标签上须注明胚胎名称,出生日期等信息(图3)。
图3. 自然配鱼收到的鱼卵
- 受精卵的分拣与消毒
- 分拣:待收集鱼卵发育3至6小时之间于显微镜下分拣出受精卵。28.5 °C培养条件下,产卵后约3小时进入1000细胞期,6小时胚盾开始形成,期间是较容易观察分辨受精与未受精鱼卵的时期。只有正常受精的鱼卵才能发育成胚胎。
- 消毒:为保证养殖系统的健康,分拣出来的胚胎参照如下方式进行消毒(胚胎应在受精24 小时内,卵膜依然完整的情况下进行消毒)(Westerfield, 2007):
- 消毒后的胚胎放置于含0.5 mg/L亚甲基蓝的胚胎养殖水中,并于28.5 °C恒温培养箱内静水养殖,其中亚甲基蓝的作用是抑制霉菌生长(Varga, 2011)。
- 每天检查胚胎的发育状况,挑出败育的死胚和发育畸形的胚胎,每日换水一次。
结果与分析
产卵当日,抽取隔板后2小时,一对成年斑马鱼正常情况下可产卵200枚以上,胚胎通体透明,卵膜在水中1至2分钟后即可膨起,10分钟后动物极膨出(图4)。
收集后的鱼卵于显微镜下观察,可以看到正常受精的鱼卵在28.5 °C标准培养温度下,动物极膨出45分钟发生第一次卵裂,进入2细胞期(图4A);3小时后进入1000细胞期(图4B);5小时后进入50%外包期,细胞开始内卷,之后依次出现胚环及胚盾(图4C);而未受精鱼卵可能在早期也会膨起动物极,并发生1-2次假性细胞分裂,但是分裂不规律,而且不会继续发育(图4D)。待收集鱼卵发育至1000细胞期时于显微镜下分拣出受精卵,养殖于含0.5 mg/L亚甲基蓝的胚胎养殖水中。
图4. 受精和未受精鱼卵的鉴别. A. 为2细胞期胚胎;B. 为1000细胞期胚胎;C.为胚盾(shield)期胚胎;D. 为发生过假性分裂的未受精鱼卵.
失败经验
自然交配后,斑马鱼不产卵、产卵量少可能有以下几方面原因:
- 产卵用雌雄斑马鱼未性成熟。正常养殖情况下,斑马鱼3个月左右性成熟。如喂养不足,无活饵料喂养且使用的颗粒饲料蛋白质含量不高,会造成3月龄的斑马鱼仍未性成熟的情况,此时配鱼就会不产卵。足量高蛋白和活饵料喂养可以促进斑马鱼发育,尽早性成熟。
- 已性成熟的斑马鱼投喂不足。斑马鱼日常投喂饵料不足,或者投喂的颗粒饲料中淀粉含量过高,都可能导致其不产卵或者产卵量低。故用于产卵的斑马鱼每日不得投喂少于2顿活饵料,或者投喂的颗粒性饲料应有较高蛋白质含量。
- 斑马鱼性成熟后第1、2次交配可能不产卵、产卵周期较长,产卵量少。坚持足量的高蛋白喂养,随着斑马鱼的继续发育,产卵量情况就会改善。6-18个月的斑马鱼是最适产卵年龄。
- 频繁使用的斑马鱼雌雄未分开饲养。未分开的雌雄鱼可能在鱼缸内完成交配产卵并吞食掉鱼卵,而在人工配鱼的时候不再产卵,故每月2次以上用于产卵的斑马鱼应雌雄分开饲养。
- 雌雄分开饲养的斑马鱼,长期未进行交配产卵之后,首次使用可能产卵少、受精率低,或胚胎死亡率高。这是由于长时间不交配产卵的雌鱼可能卵子质量降低、卵巢积蓄坏卵或患卵巢炎症等相关疾病。因此,非经常用于交配产卵的斑马鱼应雌雄混合饲养。已雌雄隔离时间过长的雌鱼可人工协助清除腹内的坏卵,具体方法为:将雌鱼充分麻醉,侧面放置于平皿中,用左手食指轻轻抵住鱼背,右手食指轻轻挤压雌鱼腹部,看到泄殖孔中排出坏卵(图5),再精心养殖一周后可用于自然交配产卵。
图5. 麻醉按压雌鱼腹部操作图
- 雌雄鱼不追逐,无法形成正确的伴随游动。可能原因如下:
- 雌雄鱼年龄和体型相差过大。斑马鱼胚胎为体外受精、体外发育,受精过程需要雌雄鱼有正常的伴随游动。年龄和体型相差过大的斑马鱼可能无法形成正确的伴随游动,体量过小的雄鱼也可能不敢追逐体量较大的雌鱼,造成产卵量少或者不产卵,故配对产卵应使用年龄相仿,体型大小接近的斑马鱼。
- 1比1比例配鱼时未插隔板。配种缸内未用隔板将雌雄鱼分隔过夜可能会导致雌雄鱼相互撕咬,而在明周期开始后无法正常交配产卵,故配鱼时应严格按照标准操作,配种缸内插上隔板过夜。
- 交配环境不利于斑马鱼繁殖。交配环境中的水温和室温太高或者太低均不利于斑马鱼追逐产卵,光照周期紊乱会直接造成斑马鱼不产卵,配种缸内水位过高也会影响雌雄鱼追逐产卵。故交配环境需保持适合斑马鱼生长繁殖的26-28 °C,光照周期稳定,配种缸置换新鲜养殖水且保持较浅的水层,都有利于促进雌雄鱼追逐。此外,交配过程中尽量避免人为干扰。
- 彼此释放产卵交配信号太弱无法感知,这时可以考虑第二次配鱼时更换雌/雄伴侣或者加强饲养一段时间再次让鱼交配。
- 收集的鱼卵高密度放置。培养皿内放置鱼卵密度过高可能会导致水质变坏,造成鱼卵较高死亡率,故鱼卵养殖密度应适宜,以每90 mm培养皿中放置50枚胚胎为宜。
溶液配方
- 胚胎养殖水(Embryo Medium)
100× E2A储存液
取140 g NaCl, 6 g KCl,19.2 g MgSO4,3.3 g KH2PO4,1.1 g Na2HPO4溶于1600 mL无菌去离子水中,4 °C长期储存。
500× E2B储存液
取11 g CaCl2溶于200 mL无菌去离子水中,-20 °C长期储存。
500× E2C储存液
取6 g NaHCO3溶于200 mL无菌去离子水中,-20 °C长期储存。
胚胎养殖水(0.5×)
取100 mL 100× E2A储存液,20 mL 500× E2B储存液,20 mL 500× E3C储存液于19 L无菌去离子水中,调节pH至7.0后定容至20 L,配置成胚胎养殖水(0.5×),高温消毒后常温短期储存。 - 胚胎消毒储存液(6%次氯酸钠)
取8%次氯酸钠溶液中加入适量的去离子水,配制成浓度6%的储存液,常温避光保存,保质期6个月。
使用时,取100 μL胚胎消毒储存液加入到200 mL的灭菌胚胎养殖水中,配置成胚胎消毒液(0.003%次氯酸钠溶液),混匀使用。胚胎消毒液必须现用现配。所有含氯溶液均不可带入鱼房,请在鱼房以外环境进行操作。 - 亚甲基蓝储存液(5 g/L)
取0.5 g亚甲基蓝粉末溶于100 mL灭菌去离子水中,配制成5 g/L的亚甲基蓝储存液,常温长期储存。
使用时,取100 μL亚甲基蓝储存液溶于1000 mL胚胎养殖水中,混匀使用,胚胎养殖水中亚甲基蓝的终浓度为0.5 mg/L。
致谢
国家斑马鱼资源中心得到科技部财政部国家科技资源共享服务平台;国家重点研发计划(2018YFA08010000);中国科学院生物资源科技服务网络计划动物实验平台项目;湖北省自然科技资源库等项目的支持。
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Copyright: © 2022 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
引用格式:柳力月, 李玲璐, 潘鲁湲, 李阔宇, 孙永华. (2022). 斑马鱼的自然交配产卵及胚胎培养技术. // 实验动物胚胎操作实验手册.
Bio-101: e1010937. DOI:
10.21769/BioProtoc.1010937.
How to cite: Liu, L. Y., Li, L. L., Pan, L. Y., Li, K. Y. and Sun, Y. H. (2022). Natural Breeding and Embryo Culture of Zebrafish. // Embryo Manipulation Manual of Laboratory Animals.
Bio-101: e1010937. DOI:
10.21769/BioProtoc.1010937.