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CRISPR/Cas9 Gene Editing Technology in Butterflies and Beetles   

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摘要:CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) 是一类规律成簇间隔短回文重复序列,广泛存在于原核生物基因组中,是细菌和古细菌进化出来用以抵御病毒和质粒入侵的获得性免疫防御机制;Cas9 (CRISPR-associated nuclease) 是CRISPR相关核酸酶。CRISPR/Cas9是由RNA指导,利用Cas核酸酶对靶向基因进行编辑的技术。本研究利用CRISPR/Cas9基因编辑技术对蝴蝶 (white)和萤火虫 (Abd-B) 的两个基因进行功能验证,为鳞翅目及鞘翅目昆虫提供基因编辑方法体系。本实验的流程为:选取靶基因进行sgRNA靶位点的设计、合成sgRNA、sgRNA体外转录成mRNA

关键词: CRISPR/Cas9, 蝴蝶, 萤火虫

实验原理

CRISPR/Cas9基因编辑技术的工作原理是crRNA (CRISPR-derived RNA) 通过碱基配对与tracrRNA (trans-activating RNA) 结合形成双链RNA,然后tracrRNA/crRNA复合体指导Cas9蛋白切断与crRNA配对的序列靶位点的双链DNA,从而实现对靶标基因的编辑功能(Hsu et al., 2013; Hwang et al., 2013)。通过人工设计这两种RNA,融合形成一条具有引导作用的sgRNA (small guide RNA),同样可以引导Cas9靶向剪切 (Bassett et al., 2014)。CRISPR/Cas9系统的高效基因编辑功能已被应用于多种生物如:果蝇(Drosophila melanogaster)、家蚕(Bombyx mori)、蝴蝶(Papilio xuthus, Papilio machaon, Kallima inachus, Bicyclus anynana, Junonia coenia)、棉铃虫(Helicoverpa armigera)、赤拟谷盗(Tribolium castaneum)、萤火虫(Abscondita terminalis)、飞蝗(Locusta migratoria)、斑马鱼(Danio rerio)及各种动物植物中(Wang et al., 2013; Li et al., 2015 and 2017; Chen et al., 2016; Yang et al., 2020; Zhang et al., 2020; Liu et al., 2021)。

实验目的

利用CRISPR/Cas9系统对靶基因 (蝴蝶:white;萤火虫:Abd-B) 进行编辑,观察基因编辑后的表型变化,验证靶基因的功能。

材料与试剂

  1. 滤芯枪头 (Axygen)
  2. 玻璃片 (帆船牌,中国)
  3. 毛细管1000 × 1.0 × 0.6 mm (BJ-40细玻管,正天易科贸公司,北京)
  4. 胶水 (KRAZY,美国)
  5. 蝴蝶 (柑橘凤蝶, Papilio xuthus) 成虫
  6. 萤火虫 (边褐端黑萤, Abscondita terminalis) 成虫
  7. Q5 high-quality DNA polymerase (M0491, NEB)
  8. QIAquick PCR Purification kit (28104, Qiagen, Germany)
  9. MAXIscript T7 Kit (AM1334, Life technology, USA)
  10. Cas9 Protein (CP01, PNA Bio Inc, USA)
  11. TransDirect Animal Tissue PCR Kit (AD201, TransGen, China)
  12. TreliefTM Animal Genomic DNA Kit (TSP201, TsingKe, China)

仪器设备

  1. 0号软画笔、摆卵模具 (7 × 12)
  2. PCR仪 (ProFlex PCR System, Life SimpliAmp, USA)
  3. 冷冻离心机 (5810 R, Eppendorf, Germany)
  4. 37 °C培养箱 (ZQZY-75BN, Shanghai Zhichu instrument Co, China)
  5. 干热仪 (BG-thermoRT, Baygene Biotech Co, China)
  6. NanoDROP (NANODROP 2000C, Thermofisher, USA)
  7. 拉针仪 (Sutter Instrument Co, MODEL P-2000, USA)
  8. 显微注射仪 (TransferMan NK2 and FemtoJet system, Eppendorf, Germany)
  9. 体式显微镜 (SMZ800, Nikon, Japan)

实验步骤

一、sgRNA靶点预测和体外转录

  1. sgRNA靶点的预测
    sgRNA特异性识别原间隔序列临近基序 (protospacer adjacent motif, PAM) (5'-NGG)。首先,在目的基因的基因编码区及其上下游300 bp搜索5'-NNN18NGG-3'模式。然后,在全基因组范围内利用种子区 (seed region) 进行脱靶检测。种子区是紧接着NGG结构的12-15 bp的序列,原则上种子区在全基因组上出现的次数越少,目的基因编辑脱靶的可能性就越低。最后,选取2-3个位于exon上的靶点进行后续实验 (表1)。sgRNA的结构序列由T7启动子介导转录,连接NNN18靶点序列 (sgRNA-F) 和sgRNA通用序列 (sgRNA-R)。sgRNA的通用序列为:
    CRISPR-F:GAAATTAATACGACTCACTATANNN18GTTTTAGAGCTAGAAA TAGC;(NNN18 为设计的靶基因的20个靶位点序列)
    CRISPR-R:AAAAGCACCGACTCGGTGCCACTTTTTCAAGTTGATAACGG ACTAGCCTTATTTTAACTTGCTATTTCTAGCTCTAAAAC。sgRNA的DNA模板直接通过两段长引物PCR合成。

    表1. 柑橘凤蝶white基因和边褐端黑萤Abd-B基因靶位点序列。

    注:T7的转录起始位点是G,所以选择靶位点时尽量选择GG GA AG开始以GG结尾。

  2. sgRNA靶点的体外转录
    1)
    sgRNA模板的制备
    合成的 (sgRNA-F) 和sgRNA通用序列 (sgRNA-R) 在以下PCR条件下合成DNA模板,100 µl的反应体系如下:

    反应条件为:98 °C,30 s;(98 °C,10 s;60 °C,30 s;72 °C;15 s) 35个循环;72 °C,10 min;12 °C保存。
    2)
    PCR产物用QIAquick PCR Purification kit纯化
    a)
    100 µl PCR产物转移到1.5 ml Nuclease-Free离心管中。
    b)
    加入500 µl PB Buffer (结合液),混匀。
    c)
    把混合的样品加入柱子中,常温12,000 rpm,离心2 min,移去废液,柱子放回离心管中。
    d)
    加入PE Buffer (漂洗液),常温12,000 rpm,离心2 min,移去废液,柱子放回离心管中。
    e)
    常温12,000 rpm,离心2 min,把柱子移入新的1.5 ml Nuclease-Free离心管中,晾干2 min。
    f)
    加入30 µl Nuclease-Free water。
    g)
    常温12,000 rpm,离心2 min,使用NanoDrop测量浓度。
    h)
    得到的sgRNA模板置入-20 °C保存待用。
    3)
    体外转录
    根据MAXIscript T7 Kit (Life technology, USA) 体外转录试剂盒,合成mRNA,反应步骤如下:
    a)
    试剂的解冻:RNA Polymerase和Ribonucleotide solutions放在冰上溶解;10× Transcription Buffer放常温溶解。
    b)
    在常温添加反应体系,加样顺序按如下添加:

    注:不要改变加样顺序,以免10× Transcription BufferDNA模板发生沉淀反应,减少反应产物。
    c)
    加样后,轻柔混合样品,使其混合均匀,并将液体离心到管底。
    d)
    PCR仪器盖子温度调到50 °C,37 °C恒温反应5 h。
    e)
    之后向反应中加入1 μl的TURBO DNAse混合均匀,继续37 °C反应15 min,以去除DNA模板。
    f)
    反应完成后,取出样品加入30 μl Nuclease-Free water,5 μl 5 M Ammonium Acetate 震荡混匀,加入165 μl (3倍体积) 无水乙醇,-20 °C沉淀2 h或者过夜。
    g)
    4 °C,12,000 rpm离心15 min,移去上清。
    h)
    加入1 ml Nuclease-Free water 配置的70%的乙醇,4 °C,12,000 rpm离心5 min,重复一次。
    i)
    加10 μl Nuclease-Free water溶解,并用NanoDrop测定浓度。
    j)
    置于-80 °C保存备用。

二、显微注射及表型观察 (以柑橘凤蝶为例)(Li et al., 2015 and 2017; Yang et al., 2020; Liu et al., 2021)

  1. 消毒
    准备注射前,需对所有用到的仪器进行紫外或者75%酒精消毒:75%的酒精浸泡载玻片1 h,毛细管200 °C干热灭菌2 h,整个显微注射室紫外消毒2 h。
  2. 拉针及磨针
    拉针:拉针仪熔断毛细管 (熔断参数为:Heat: 400、Fil: 5、Vel: 50、Del: 150、Pull: 100),即可得到细长的可装载试剂的毛细管针。磨针:注射的钨针需要打磨到圆锥形,没有棱角,以便给蝴蝶卵壳打孔,不引起额外机械损伤。
  3. 卵的采集及固定
    产卵:柑橘凤蝶成虫会把卵产在寄主植物胡椒木 (Zanthoxylum piperitum) 的叶子上。在准备注射前,换一盆叶子鲜嫩而少的胡椒木,间隔20 min拿出,同时换一盆新的植物进去待下一批产卵。卵的收集:轻取卵统一收集到一个含有少许无菌水的90 mm培养皿中,用无菌水清洗两遍去除杂质。摆卵:在体式显微镜下,按模板7 × 12的间距,用0号毛笔把卵有序排在载玻片上 (粘在叶子的面在下),之后放入超净工作台晾干水分。固定卵:用玻璃针蘸取少量胶水,置于晾干后卵的一侧,使其固定在载玻片上,之后把玻片置于注射室晾干,即可进行注射。


    1. 蝴蝶基因编辑操作流程图

  4. 双针注射
    使用TransferManNK2和FemtoJet双针显微注射系统 (Eppendorf,Germany) 进行双针注射。先用钨针扎出小孔,然后将玻璃针切换到钨针的位置,插入卵中注射 (图1,视频1)。注射的位置在粘胶的另一侧,以最终浓度1,000 ng/µl Cas9蛋白和800–1,000 ng/µl sgRNA进行微量注射,每个基因注射大约200个卵。一板 (7 × 12个) 需要大约10 min,最后记录每板注射的卵数量,从产卵到注射完成尽量在2 h,因为蝴蝶卵的发育在2 h左右形成合胞体,超过2 h注射,敲除率将会降低或者不能敲除。

    视频1. 柑橘凤蝶显微注射演示视频

  5. 饲养及表型观察
    注射的卵放置在25 °C、12 h光照/12 h黑暗、80%相对湿度的培养箱中,每天观察卵的发育情况,当卵变黑时,往培养皿中放置一片寄主植物胡椒木叶子 (从植物采摘,以湿棉球裹住叶柄切口保湿),供一龄幼虫初孵出时食用。每天早和晚各检查幼虫孵化情况,记录每天的孵化率,及时将叶子连同初孵幼虫转移到新鲜胡椒木叶片上,并在27 °C,16 h光照/25 °C,黑暗8 h的培养箱中饲养,并保持80%的相对湿度。仔细观察幼虫形态变化。在化蛹之前,将排泄废物的五龄末期游走的幼虫转移到塑料筐中,等待其化蛹及观察表型变化。羽化的成虫,观察表型变化,对有表型的个体进行手工交配,然后将交配的成虫放在带有寄主植物的蚊帐中进行产卵,及观察行为是否有异常 (图2)。
  6. 表型检测
    胚胎敲除率检测:选取注射了4天已经发育的20颗卵直接进行PCR克隆检测,检测敲除率,对敲除率高的基因,继续饲养幼虫观察表型,而对敲除率低的基因重新调整注射比例或者重新设计靶点进行注射。表型检测:对获得的具有疑似表型的个体进行DNA提取、PCR扩增、TA克隆、Sanger测序分析 (图3),RNA提取、转录组测序分析。


    2. 柑橘凤蝶white基因突变体表型。(a) 四龄幼虫;(b) 五龄幼虫;(c) 五龄幼虫精巢;(d) 成虫眼睛。


    3. white基因突变体检测。蓝色字体为靶点序列 (下划线为PAM),红色为插入和缺失序列。

三、显微注射及表型观察 (以边褐端黑萤为例) (Zhang et al., 2020)

  1. 消毒
    准备注射前,需对所有用到的仪器进行紫外或者75%酒精消毒:75%的酒精浸泡载玻片1 h,毛细管200 °C干热灭菌2 h,注射室紫外消毒2 h。
  2. 拉针
    拉针仪熔断毛细管 (熔断参数:Heat:300、Fil:5、Vel:50、Del:150、 Pull: 100),即可得到细长的可装载试剂的毛细管针。
  3. 卵的采集及固定
    产卵:饲养或者采集的萤火虫成虫,区分雌雄,在饲养盒中放置新鲜的苔藓,之后按性别1:1的比例将萤火虫置于饲养盒中,饲养盒放置于黑暗避光处,等待其交配产卵。卵的采集:取出苔藓,在含无菌水的培养皿中轻轻晃动,使卵掉入培养皿中,去除多余苔藓残渣,卵用无菌水清洗两遍。摆卵:用剪去细头的1 ml枪头吸取卵有序的排放在载玻片上,用吸水纸吸干水分,等待注射 (图4)。


    图4. 萤火虫显微注射流程图

  4. 单针注射
    使用TransferManNK2和FemtoJet显微注射系统进行单针注射 (图4)。以最终浓度1,000 ng/µl Cas9蛋白和800–1,000 ng/µl sgRNA进行微量注射,每个基因注射大约200个卵,从产卵到注射完成尽量固定在5 h内,因为萤火虫卵的发育在5 h左右形成合胞体,超过5 h注射,敲除率将会降低或者不能敲除。
  5. 饲养及表型观察
    注射的卵置于放有湿水纸的保鲜盒中,最后置于27 °C,12 h光照/12 h黑暗,80%相对湿度的培养箱中饲养,每天观察卵的发育情况,当一龄幼虫孵化时,每天早和晚各检查幼虫孵化情况,记录每天的孵化率,及时将幼虫转移到新的饲养盒中。在饲养盒中放置剪碎的螺蛳肉块,方便幼虫取食,后将饲养盒放在16 h光照(27 °C)/黑暗8 h (25 °C) 的培养箱中饲养,并保持80%的相对湿度。化蛹之前,将末龄游荡、不进食的幼虫转移到含有糊状的泥土的塑料盒中,等待其化蛹及观察表型变化。羽化的成虫,观察表型变化,及观察行为是否有异常 (图5)。
  6. 表型检测
    胚胎敲除率检测:选取注射了14天已经发育的20颗卵进行直接PCR克隆检测,检测敲除率,对敲除率高的基因,继续饲养幼虫观察表型,而对敲除率低的基因重新调整注射比例或者重新设计靶点进行注射。表型检测:对获得的具有疑似表型的个体进行DNA提取、PCR扩增、TA克隆、Sanger测序分析 (图6),RNA提取、转录组测序分析。


    5. 边褐端黑萤Abd-B基因突变体表型。(a) 野生型背面;(b) 野生型腹面;(c-j) 突变体。数字1-10代表1到第10腹节,红色字体标注有突变的腹节,标尺:1毫米。


    6. Abd-B基因突变体检测。蓝色字体为靶位点区域,红色为插入和缺失序列。

四、注意事项

  1. 候选基因靶位点的选取:每个基因尽量选取前几个外显子上的靶位点或者选择基因保守区域的靶位点,两个靶位点之间的间隔在100–200 bp之间,以便形成大片段的敲除。
  2. 体外转录:一个反应的体外转录产物大概约为6–20 μg,为了获得高浓度的产物可以进行两个体外转录反应,最后将反应后的产物合并沉淀,已达到获取高浓度和多产物的目的。
  3. 注射时期:每种昆虫卵发育的速度不一致,如柑橘凤蝶发育到合胞体大约需要2 h,萤火虫大约需要5 h,尽量在发育的早期完成注射实验,以提高实验的成功率。
  4. 注射浓度:靶基因的注射可以进行浓度梯度注射预实验,先进行高浓度注射,确定是否对靶基因有敲除,并逐步降低注射产物的浓度以达到敲出率和孵化率的平衡。此外,Cas9蛋白和sgRNA的比例最好控制在1.2 : 1左右。
  5. 表型观察:对注射饲养的昆虫,与野生型昆虫仔细比对观察表型变化,尽可能每个龄期都进行观察,以免错过突变体表型特征。
  6. 注射系统的选择:选择单针还是双针注射系统依据每个物种卵壳的硬度来决定。卵壳比较薄的物种 (如鞘翅目的边褐端黑萤、膜翅目的法老蚁、双翅目的果蝇) 可以用单针系统进行注射,既直接用装载试剂的玻璃针进行注射; 而大部分鳞翅目昆虫其卵壳比较硬 (如柑橘凤蝶、金凤蝶、家蚕) 需用双针注射系统进行注射,既先用钨针打出小孔,最后用装载试剂的玻璃针注射。

致谢

感谢国家自然科学基金委员会创新研究群体项目 (31621062)、国家自然科学基金委员会面上项目 (31472035、32070482)、云南省科学技术厅面上项目(2014FB179)、中国科学院西部之光项目 (A类) 对中国科学院昆明动物研究所遗传资源与进化国家重点实验室的支持。

参考文献

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Copyright: © 2021 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
引用格式:刘贵春, 何金武, 董志巍, 赵若苹, 王文, 李学燕. (2021). 蝴蝶和甲虫CRISPR/Cas9基因编辑技术. Bio-101: e1010644. DOI: 10.21769/BioProtoc.1010644.
How to cite: Liu, G.C., He, J.W., Dong, Z.W., Zhao, R.P., Wang, W and Li, X.Y. (2021). CRISPR/Cas9 Gene Editing Technology in Butterflies and Beetles. Bio-101: e1010644. DOI: 10.21769/BioProtoc.1010644.
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