Fluorescence in Situ Hybridization of Drosophila Tissues   

材料与试剂

1. 移液枪头
2. 培养皿
3. 载玻片
4. 盖玻片
5. 500 μl离心管
6. 雌性果蝇成虫
7. Grace’s Insect Medium
8. 4%多聚甲醛 (paraformaldehyde, PFA)
9. PBS (10×) (Beyotime, ST476)
10. Triton^TM X-100
11. 20% Tween 20
12. 马血清
13. 一抗 (特异性结合目标蛋白)
14. 二抗 (带有荧光基团，特异性结合一抗)
15. DNA染料：DAPI或者Hoechst 33342
16. 凡士林
17. 指甲油
18. C/A/GTP
19. UTP
20. Fluor-UTP (Alexa Fluor^® 488-5-UTP, Alexa Fluor^® 546-14-UTP或者BODIPY^®-TR-14-UTP，产自Molecular Probes^TM)
21. 5×转录缓冲液
22. DEPC·H₂O (酸二乙酯处理过的纯水)
23. 模版DNA
24. T3 RNA聚合酶
25. 甲酰胺
26. 20×盐水-柠檬酸钠缓冲液
27. 肝素
28. 酵母tRNA
29. 柠檬酸
30. 丙酮
31. 原位混合液 (见溶液配方)
32. 磷酸缓冲液 (1× PBS) (见溶液配方)
33. PST (1×) (见溶液配方)

仪器设备

1. 镊子
2. 解剖显微镜 (Olympus, SZ61)
3. 移液器 (200 μl和20 μl)
4. 激光扫描共聚焦显微镜 (Leica Sp5II或SP8)
5. 果蝇二氧化碳麻醉工作站

实验步骤

一、DNA模板的序列设计
本技术先从DNA寡聚体中通过体外转录制备短的荧光标记的RNA探针。下面是DNA寡聚体模板的序列设计方法。

1. 找到一个成熟的RNA序列 (mRNA, miRNA, lncRNA等)。
2. 将所有“U”替换为“T”。
3. 从替换后的序列中选择一段 (20~50核苷酸长)。
   注：对于短RNA (< 50核苷酸)，可使用整个成熟序列。对于长RNA，使用50个核苷酸。
4. 确保所选择的片段中有> 10 “A”s (即10个A碱基)。如果少于10“A”s，在5'端加上一些“A”s，组成10“A”s (确保片段中含有10个以上的A 碱基)。DNA模板包含10个以上的“A”碱基的目的是后面经体外转录生成的RNA探针有足够的U碱基获得标记。
5. 在3'端添加T3启动子标签 (CCCTTTTAGTGGGTTAATT)。如果目标序列以“C”结尾，则删除多余的“C”。
6. 用整个寡核苷酸序列BLAST基因组，确保基因组中没有类似的序列。如果是，改变目标序列以避免交叉反应。
7. 如果目标RNA足够长，设计两个非重叠探针。
8. 订购DNA寡聚体。
   
   

二、体外转录制备荧光标记的RNA探针

1. 将下表所示的化学品添加到500 μl的离心管中。
   
   
   
   
2. 简单混合和离心。
3. 在37 °C下孵育2小时。
4. 用层析柱或乙醇沉淀法纯化RNA探针。
5. (可选) 用非变性琼脂糖凝胶电泳 (含或不含溴化乙锭染色) 分析0.5 μl荧光标记的RNA探针。
6. 将荧光标记的RNA探针按1:50比例稀释在原位混合液中作为探针储存液。将探针储存液存放在-20 °C下。
   
   

三、果蝇组织即速荧光原位杂交

1. 在Grace’s Insect Medium中解剖果蝇 (解剖方法参见：吴铮和刘冀珑 [2019]；Tastan和Liu [2015])。
2. 将样品 (压片或者全组织标本) 固定在固定剂中 (1× PBS中4%多聚甲醛用于检测RNA，或95%乙醇用于检测DNA) 室温15~30分钟。
3. 对于压片样品希望检测DNA，请转到第8步。对于所有其他样品，用PBS清洗样品两次，每次5 min。
4. 对于压片样品希望检测RNA，请转到第7步。对于全组织标本，将20 μl 20%吐温添加到1 ml洗涤液 (= PBS) 中 (以防止粘性)，并将组织转移到500 μl小管中。尽可能地丢弃液体。
5. 用100 μl原位混合液清洗，5分钟。
6. 将样品储存在-20 °C原位混合液中 (样品可储存数月至数年)，或执行第9步。
7. 对于压片样品，转移到95%乙醇中，5分钟。
8. 将载玻片一个一个地浸入丙酮中，每个5秒，然后让载玻片在通风橱中风干。
9. 加荧光标记探针，使用1:50~5K (取决于探针强度)。无热处理。
10. 42 °C (RNA) 或52 °C (DNA) 过夜。也可以只在90 °C处理5分钟。
11. 将杂交后的样品放进-20 °C保存 (样品可储存几天至数年)，或者制片放在显微镜下观察及成像 (效果参见Liu等，2006一文中图1，6D-E，8和Liu和Gall，2007一文中图1C-H)。
    
    

四、果蝇组织蛋白质和RNA/DNA定位

1. 如果希望定位蛋白质和RNA和 (或) DNA，可以先按照正常免疫组织化学，分别用一抗和二抗过夜将蛋白质染色。
2. 免疫荧光染色完的样品用4%多聚甲醛在室温下再固定5分钟。
3. 然后用PBS洗去固定液 (4%多聚甲醛)。
4. 将样品放入杂交混合液，储存在-20 °C原位混合液中 (样品可储存数月至数年)，或执行第5步。
5. 加荧光标记探针 (注意荧光探针必须与蛋白质荧光染料发射光谱有所不同，必须在显微镜下可以区别开蛋白质标记的荧光和核酸标记的荧光)，使用1:50~5K (取决于探针强度)。无热处理。
6. 42 °C (RNA) 或52 °C (DNA) 过夜。 
7. 将杂交后的样品放进-20 °C保存 (样品可储存几天至数年)，或者制片放在显微镜下观察及成像 (效果参见Liu等，2006一文中图2-4，6A-C，7和Liu和Gall，2007一文中图1A-B，2D)。
   
   

五、制片和成像

1. 在干净的工作台上铺两层纸巾。
2. 用镊子夹住盖玻片 (18 mm × 18 mm) 的一角，把盖玻片轻轻放置在纸巾上。
3. 在盖玻片四角涂上凡士林。
4. 使用移液器把杂交后的组织和15 μl左右的杂交混合液转移至盖玻片上。如果组织太大，需要把移液枪头末端用锋利的刀片切去末端，使得开口足够大。
5. 将载玻片轻轻压在盖玻片上，注意同时接触到盖玻片四角的凡士林。使得盖玻片通过凡士林粘在载玻片上。翻转载玻片，使得盖玻片在上面，轻轻将载玻片放置于纸巾上。
6. 使用干净的移液管轮流轻压盖玻片四角，使得四角的高度一致。如果有气泡，可以倾斜载玻片并且轻压盖玻片来赶出气泡。如果有液体溢出，轻轻用纸巾吸取多余的液体。
7. 使用指甲油将盖玻片的四周密封。注意保持盖玻片中心和有样品的位置没有指甲油。
8. 待指甲油干了之后，仔细检查密封情况。必要时补充指甲油。
9. 密封好的样品可以立即使用荧光显微镜或者激光扫描共聚焦显微镜观察并进行成像。
10. 制片尽量在使用显微镜成像之前半小时至4小时之内完成。对于非新鲜的含样品的载玻片可以放在-20 °C保存。
    

溶液配方

1. 原位混合液 (In situ mix)
   按如下比例配制50 ml原位混合液：
   
   配制原位混合液，在室温充分混匀，以2 ml为单位分装在25个离心管中，保存于-80 °C
2. 磷酸缓冲液 (1× PBS)
   使用去离子水稀释PBS (10×) (Beyotime ST476) 至1×
3. PST (1×)
   1× PBS
   0.3% Triton^TM X-100
   0.5%马血清
   

致谢

早期方法为作者在美国卡内基研究所Joseph Gall实验室做博士后期间优化。刘冀珑实验室的工作得到上海科技大学，英国牛津大学以及英国医学理事会的支持。本文实验方案改编自Liu等 (2006)，Liu和Gall (2007) 以及Nizami等 (2015).

参考文献

1. 吴铮，刘冀珑. (2019). 果蝇组织免疫组织化学. Bio-101:e1010256. 10.21769/BioProtoc.1010256.
   
2. Liu, J. L., Murphy, C., Buszczak, M., Clatterbuck, S., Goodman, R. and Gall, J. G. (2006). The Drosophila melanogaster Cajal body. J Cell Biol 172(6): 875-884.
3. Liu, J. L. and Gall, J. G. (2007). U bodies are cytoplasmic structures that contain uridine-rich small nuclear ribonucleoproteins and associate with P bodies. Proc Natl Acad Sci U S A 104(28): 11655-11659.
4. Nizami, Z. F., Liu, J. L. and Gall, J. G. (2015). Fluorescent in situ hybridization of nuclear bodies in Drosophila melanogaster ovaries. Methods Mol Biol 1328: 137-149.
5. Tastan Ö. Y and Liu J. L. (2015). Visualizing Cytoophidia Expression in Drosophila Follicle Cells via Immunohistochemistry. Methods Mol Biol 1328:179-189.