摘要: 本实验使用商业化的试剂盒进行,该试剂盒采用硅胶柱纯化方式,适合于从小于100 mg的植物组织中快速简单的提取总RNA。该试剂盒能彻底去除多糖类、酚类和酶抑制物等杂质污染。纯化的RNA可直接用于RT-PCR、Northern杂交和核酸保护等实验。提取过程无需酚氯仿抽提,也无需耗时的醇类沉淀。在30 min内可完成1个至多个样品的提取工作。使用硅胶柱纯化技术,大大减少了操作时间,减少RNase接触机会,因而该试剂盒对操作环境和操作者技能要求不高,即便是初学者也都能获得理想的结果。
材料与试剂
枪头 RNase-free离心管 (1.5 ml,2 ml) 草莓果实 E.Z.N.A® plant RNA kit试剂盒 (Omega Bio-tek, catalog number: R6827)Buffer RCL RWC RNA wash buffer I DEPC water HindBind RNA Spin column gDNA filter column 2 ml collection tube β-巯基乙醇 Plantaid (博迈德, catalog number: RA107) 液氮 乙醇 10x Loading buffer (Takara, catalog number: 9157) 仪器设备
研磨用具 移液枪 振荡仪器 水浴锅 离心机 电泳仪 微量紫外分光光度计 实验步骤
液氮研磨果实样品并装入1.5 ml RNase-free离心管,每管样品量大约100 mg (具体根据果实发育不同时期含水量而异,如小绿果时期取样量小于 50 mg,成熟期果实取样量不少于300 mg)。注:本方法也可用于草莓叶片RNA的提取,每管样品量同小绿果,约50 mg。 加入500 μl buffer RCL (见溶液配方) (buffer RCL在使用前应加入β-巯基乙醇:每 1 ml buffer RCL加20 μl β-巯基乙醇),涡旋振荡混匀。 再向离心管中加入博迈得公司的plantaid 100 μl,再次涡旋震荡混匀。 55 °C水浴锅中裂解1-3 min后,可再次涡旋震荡。 室温14,000 x g 离心5 min。 将上清转入gDNA filter column (装入2 ml collection tube),14,000 x g 离心2 min (上清过多时可分2次转入)。 将滤过液转入新的2 ml RNase-free离心管中,加入等体积的buffer RCB,吸打混匀。 将混合液转入HindBind RNA Spin column (装入2 ml collection tube),10,000 x g 离心1 min,弃掉滤过液,将column放回collection tube。 加400 μl RWC,10,000 x g 离心1 min,弃掉滤过液和collection tube。 将column放入新的collection tube,加入500 μl RNA wash buffer I,10,000 x g 离心1 min,弃掉滤过液。 重复上一步操作。 10,000 x g ,2 min空离除去乙醇。 将HindBind RNA Spin column放入干净的1.5 ml RNase-free离心管,悬空滴入30 μl DEPC water至HindBind RNASpin column中的膜上,室温静置2 min,10,000 x g 离心2 min,即得RNA溶液。 RNA 质量的检测:取2-3 μl RNA溶液与loading buffer 混匀,用琼脂糖凝胶电泳检测RNA条带及是否有DNA污染。 RNA浓度测定:取2 μl RNA 溶液用微量紫外分光光度计测定浓度并评估其质量。 Please login or sign up for free to view full text
Copyright: © 2018 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
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Plant Science > Plant molecular biology > RNA
Molecular Biology > RNA > RNA extraction
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