摘要: 植物DNA的提取通常采用液氮研磨的方法破碎植物组织和细胞,通常需在抽提缓冲液中加入巯基乙醇以降低植物细胞匀浆中的多种氧化酶类对DNA抽提的影响。CTAB (十六烷基三甲基溴化铵) 是阳离子去污剂,可溶解细胞膜,它能与核酸形成复合物,在高盐溶液中可溶,当盐溶液浓度降低到一定程度时从溶液中析出,通过高速离心既可将CTAB与核酸的复合物与蛋白、多糖类物质分离,然后将CTAB与核酸的复合物沉淀重新溶解于高盐溶液中,再加入乙醇使核酸沉淀,再将沉淀DNA的溶于TE溶液中,即得草莓组织总DNA溶液。DNA的光谱吸收峰在260 nm处,蛋白的吸收峰在280 nm处,测定DNA含量时,通常计算OD
260 /OD
280 比值,该值为1.8-2.0时,DNA纯度较高,可进行后续PCR试验。
材料与试剂
枪头 离心管 草莓组织 β-巯基乙醇 液氮 氯仿 异戊醇 异丙醇 NaAc 乙醇 Tris-HCl (pH 8.0) (Solarbio, catalog number: T1140) Na2 -EDTA CTAB PVP NaCl RNase (Takara, catalog number: 2311A) RNase-TE溶液 (见溶液配方) CTAB缓冲液 (见溶液配方) 仪器设备
研磨用具 移液枪 水浴锅或烘箱 离心机 -20 °C冰箱 NanoDrop超微量核酸蛋白测定仪 电泳仪 高压灭菌锅 实验步骤
在CTAB缓冲液中加入β-巯基乙醇 (终浓度为0.2%),使用前65 °C预热。 称取100 mg草莓果肉组织/50 mg叶片组织,液氮研磨成粉末,装入预冷的2 ml离心管中。 加入500 μl预热的CTAB,混匀,65 °C温育1 h,期间每15 min颠倒混匀。 冷却到室温,加入500 μl氯仿:异戊醇 (24:1) 抽提,10,000 x g 离心10 min,抽取上清液。 上清液加入等体积 (500 μl) 的氯仿:异戊醇 (24:1) 再次抽提,10,000 x g 离心10 min,再次吸取上清液。 加入2/3体积的-20 °C预冷的异丙醇,1/10体积的3 M NaAc (pH=5.4),轻轻混匀,-20 °C沉淀1 h。 10,000 x g 离心10 min,弃上清。 加入500 μl 70%乙醇洗涤沉淀,10,000 x g 离心10 min,弃上清。 重复步骤8。 放置10 min,待残存乙醇挥发完全,加入50 μl含RNase (30 μl/ml) 的TE溶液,37 °C温育30 min。 用NanoDrop超微量核酸蛋白测定仪测定DNA溶液在波长230 nm,260 nm和280 nm处的吸收值并获得DNA浓度。取2 μl DNA溶液进行琼脂糖凝胶电泳,查看DNA完整性,-20 °C保存。 溶液配方
RNase-TE溶液Tris-HCl (pH 8.0) 终浓度10 mM 500 μl Na2 -EDTA 终浓度1 mM 100 μl
加水至50 ml 高压灭菌,室温保存 CTAB缓冲液1 M Tris-HCl (pH 8.0) 10 ml 0.5 M Na2 -EDTA (pH 8.0) 4 ml CTAB 2 g PVP 2 g NaCl 8.19 g
定容至100 ml,高压灭菌,室温避光保存,用前按体积比加入3%的β-巯基乙醇 Please login or sign up for free to view full text
Copyright: © 2018 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
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Plant Science > Plant molecular biology
Molecular Biology > DNA
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