材料与试剂
- 一次性塑料无菌分隔培养皿 (90 × 15 mm)
- 封口膜 (ParafilmTM)
- 胡萝卜根器官:转移Ri T-DNA 质粒的胡萝卜 (Daucus carota L.) 根器官,克隆为DC2
- AM真菌:Rhizophagus irregularis DAOM 197198 (或者其他种类的AM真菌)
- 细菌:解磷细菌 (根据具体研究问题选择特定功能细菌或细菌群落)
- MSR (Modified Strullu-Romand Medium) 培养基 (见溶液配方)
仪器设备
- 镊子
- 解剖刀
- 酒精灯
- 高压灭菌锅
- 超净工作台
- 恒温培养箱
- 精密pH计
- 天平
实验步骤
- 母液配制及保存方法
- 毛根培养
采用双分隔培养皿 (90 × 15 mm) 胡萝卜根器官无菌培养体系,具体装置见图1。在其中一室 (根室) 中加入25 ml固体MSR培养基,在另一室 (菌丝室) 靠近塑料横隔处,加入4 ml固体MSR培养基 (不含蔗糖,NaFeEDTA和维生素) 形成斜面。用酒精火焰灼烧灭菌过的镊子挑取胡萝卜根器官,在根室培养基上放置2-3根6 cm左右被AM真菌侵染的根段,用封口膜密封培养皿,放置于恒温培养箱中27 °C黑暗条件下培养。培养过程中,定期查看胡萝卜根器官的生长情况,将越过横隔的根系挑回根室。

图1. 根室中被AM真菌侵染的胡萝卜根系和菌丝室中的菌丝及孢子
- 接种细菌
培养6周后,当AM真菌菌丝跨过横隔长满斜面时,在菌丝室加入10 ml液体MSR培养基 (不含蔗糖,NaFeEDTA和维生素)。继续培养4周后,当AM真菌的菌丝覆盖菌丝室大部分液面时,开始接种解磷细菌。细菌在LB培养基中活化培养至OD600值在0.4-0.6时,5,878 × g 离心6 min,去掉上清液后加灭菌的0.85% (w/v) NaCl溶液反复清洗3次。菌液调整到OD600 = 0.8用于接种。在接种时,将菌丝室的液体培养基 (约9 ml) 转移到15 ml的无菌离心管内,用MSR液体培养基 (不含蔗糖,NaFeEDTA和维生素) 定容到10 ml,然后每管加入2 ml制备好的菌液,充分混匀后依次加入到每个培养皿中的菌丝室内。

图2. 分隔培养皿胡萝卜根器官无菌培养体系装置
溶液配方
MSR培养基母液配方
补充说明:本方法采用MSR培养基 (Modified Strullu-Romand Medium) 来培养AM真菌,具体配方见表1。准备培养基前,先配制好培养基母液,置于4 °C保存。
在配制培养基时,计算好需要的体积,按照表1的用量吸取相应体积的母液,培养毛根的MSR培养基中需加入10 g/L蔗糖
定容后使用0.1 M HCl或NaOH将pH调为5.5,然后添加3 g/L GelzanTM (PhytoTechLABS, Lenexa, KS) 或3 g/L GelGroTM (ICN Biochemicals, Cleveland, OH), 121 °C灭菌30 min待用
表1. MSR培养基母液配方
| 成分 | 储备液浓度 (g/L) | 1L营养液吸取储备液体积 (ml) |
| 大量元素 | MgSO4·7H2O | 73.9 | 10 |
| KNO3 | 7.6 |
| KCl | 6.5 |
| KH2PO4 | 0.41 |
| 钙 | Ca(NO3)2·4H2O | 35.9 | 10 |
| 铁 | NaFeEDTA | 0.32 | 5 |
| 微量元素 | MnSO4·4H2O/MnSO4·H2O | 2.45/1.86 | 1 |
| ZnSO4·7H2O | 0.28 |
| H3BO3 | 1.85 |
| CuSO4·5H2O | 0.22 |
| Na2MoO4·2H2O | 0.0024 |
| (NH4)6Mo7O24·4H2O | 0.22 |
| 维生素 | 泛酸钙 (calcium panthotenate) | 0.18 | 5 |
| 生物素 (biotin) | 0.0002 |
| 烟酸 (nicotinic acid) | 0.2 |
| 维生素B6 (pyridoxine) | 0.18 |
| 维生素B1 (thiamine) | 0.2 |
| 维生素B12 (cyanocobalamine) | 0.08 |
致谢
该方法是在张林副教授(中国农业大学资源与环境学院)论文基础上进行改进的,在此表示感谢。同时,本工作受到了国家自然科学基金联合基金重点支持项目“灰漠土磷养分高效利用相关的生物肥力性状演变过程及培育机制”(U1703232)的资助。
参考文献
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- Voets, L., Dupré de Boulois, H., Renard, L., Strullu, D. G. and Declerck, S. (2005). Development of an autotrophic culture system for the in vitro mycorrhization of potato plantlets. FEMS Microbiol Lett 248: 111-118.
- Voets, L., Goubau, I., Olsson, P. A., Merckx, R. and Declerck, S. (2008). Absence of carbon transfer between Medicago truncatula plants linked by a mycorrhizal network, demonstrated in an experimental microcosm. FEMS Microbiol Ecol 65: 350-360.
- Zhang, L., Xu, M. G., Liu, Y. Zhang, F. S., Hodge, A. and Feng, G. (2016). Carbon and phosphorus exchange may enable cooperation between an arbuscular mycorrhizal fungus and a phosphate‐solubilizing bacterium. New Phytol 210(3): 1022-1032.
- Zhang, L., Feng, G. and Declerck, S. (2018). Signal beyond nutrient, fructose, exuded by an arbuscular mycorrhizal fungus triggers phytate mineralization by a phosphate solubilizing bacterium. ISME J 12(10): 2339-2351.