材料与试剂
- 5 ml 流式管
 - 可放置5 ml流式管的试管架2~3个
 - 解剖工具和烧杯
 - 六孔板
 - 枪尖若干:2 µl、20 µl、100 µl、200 µl 和 1 ml 
 - 40 μm过滤筛
 - 15 ml离心管
 - 1 ml带针注射器
 - 96孔U型底板
 - 小鼠 (C57BL/6小鼠,雌雄不限,8周以上,1只)
 - 待滴定的流式抗体 (本文以Anti-Hμman/Mouse CD45R (B220) Alexa Fluor 700为例,eBioscience,catalog number: 56-0452-82)
 - 2% 新生牛血清
 - DNase I (Worthington,catalog number: LS002140)
 - FCS
 - PBS 溶液和蒸馏水 (0.22 µm 滤膜过滤)
 - RPMI-1640 (HyClone, catalog number: SH30809.01)
 - 25 mM HEPES pH7.4 (Sigma-Aldrich,catalog number: H3375)
 - EDTA
 - NaN3 
 - R2培养基 (见溶液配方)
 - 组织分离培养基 (见溶液配方)
 - FACS缓冲液 (见溶液配方)
 
仪器设备
- 10 µl、200 µl、1,000 µl移液枪
 - 台式冷冻离心机 (Thermo,产品型号LEGEND RT+)
 - 细胞颗粒计数仪 (Beckman, 产品型号Coulter Z2)
 - BD FACS 流式细胞仪 (BD,产品型号BD LSRFortessa),配置 3B-6V-4YG-3R-2UV (表 1)
表1. 流式细胞仪激光器配置信息

 
实验步骤
一、细胞分离
- 用二氧化碳对小鼠实施安乐死,随后颈部脱位处死。
 - 解剖脾脏 (具体操作步骤详见视频1),将脾脏放入一个位于6孔板中的40 μm细胞筛中,每个孔内已加入5 ml组织分离液。
视频1. 解剖脾脏步骤 
 - 用1 ml注射器从孔中吸取1 ml组织分离液,注入脾脏,冲洗脾细胞,然后用干净的注射器柱塞将脾细胞挤压至粉碎,使细胞通过40 μm细胞筛。尽量只施加推力,不要研磨组织。
 - 用1 ml移液枪将脾细胞吹打至无可见团块。
 - 将细胞转移到15 ml离心管中,并在4 °C下311 x g离心细胞5分钟。
 - 倒出上清液,将细胞轻轻地重新悬浮在5 ml FACS缓冲液中;
 - 计数细胞。
注:请根据实验室具体设备情况,选择相应计数方法。  - 根据细胞计数结果,取1 x 106细胞在96孔U型板中。
 
二、细胞染色 (表 2)
表2. 流式染色配置方案

- 按照以上染色方案预先配制好不同稀释比例抗体单染管溶液50 μl,每孔加入50 μl单染管溶液,离心96孔板 (311 x g,1分钟,4 °C),除去上清液,轻轻拍打板两侧使细胞颗粒松动;
 - 将Un-stain管细胞重新悬浮在50 μl/孔FACS缓冲液中;其余单染管加入预先稀释好的抗体的单染管,4 °C避光染色30分钟;
 - 在每个孔中加入200 μl的FACS缓冲液,以清洗细胞;
 - 离心96孔板 (311 x g,1分钟,4 °C),除去上清液,轻轻拍打板两侧使细胞颗粒松动;
 - 再次重复清洗步骤;
 - 向细胞中加入200 μl的FACS缓冲液,并将所有细胞转移到冰上的流式上机管中。
 
三、上机检测流程
- 依次创建 New Folder> Experiment > Specimen > Tube。
 - 在Parameters 窗口中保留:Alexa Fluor 700。
 - 上阴性对照管,调节 FSC/SSC 电压,使P1门圈中样本群。
 - 将各单染管依次上样,调整电压,确认阳性群低于各荧光通道的最高检测范围。
 - 依次记录各单染管。
 
结果与分析
实验结果见图1。

图1. 不同稀释比例的B220-AF700对野生型小鼠脾脏细胞的染色情况
失败经验
- 使细胞和所用到的缓冲液和试剂尽可能地保持在冰上。
 - 细胞离心后,请用力拍打96孔板以致细胞颗粒松散。
 - 96孔U型板需要移液时尽量用排枪,以免加错孔。
 - 操作过程动作轻柔,尽量避光,于冰上操作;排枪加样、混匀时应小心细致,防止样品污染。
 
溶液配方
- R2培养基
RPMI-1640 
2%新生牛血清
25 mM HEPES pH7.4  - 组织分离培养基
在R2培养基 (100 μg/ml最终) 中添加DNase I 
100 μg/ml (来自10 mg/ml原液) - FACS缓冲液
2% FCS
2 mM EDTA
0.1% NaN3
溶于PBS (预冷)
 
致谢
侯百东实验室的工作得到中国科学院,国家自然科学基金和国家科技重大专项的支持。