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*Contributed equally to this work 发表时间: 2021年10月22日 DOI: 10.21769/BioProtoc.1010861 浏览次数: 3626
研究背景
理想的转染条件需要同时达到两方面要求:一是转染阳性率高,二是转染毒性低。影响siRNA转染效果的因素,包括转染方式、细胞接种数目、转染试剂的种类及用量、转染时间及siRNA浓度等。
转染方式 siRNA转染实验共涉及三个元素:细胞、siRNA和转染试剂。根据三个元素加入顺序的不同,转染方法分为顺式转染和反式转染两类 (Persengiev et al., 2004) (表1)。在反式转染的步骤中,先将siRNA加入多孔板中,然后加入转染试剂。转染复合物形成之后,加入细胞悬液。顺式转染则相反,先在孔中加入细胞,细胞贴壁后加入siRNA和转染试剂形成的转染复合物。对于高通量实验,反式转染是首选的转染方式,因为:1) 铺细胞和转染一步完成,自动化步骤简便,可实现更高通量;2) 不需要在一块单独的板上制备siRNA-转染试剂复合物再转移至细胞板内,节约了耗材成本;3) siRNA文库可提前制备好并储存在孔板中冰箱保存,筛选实验开展前溶解后可直接使用,文库制备和筛选实验开展的时间安排相对灵活。
表1. 顺式转染与反式转染
细胞接种数目 细胞接种数目的确定需要同时考虑两方面的因素:第一,研究者所关注的生物学表型对细胞密度的要求。例如,筛选细胞增殖的调控基因时,需尽量保证整个实验过程中细胞处于增殖状态,若过早达到接触抑制会导致丢失阳性基因,因此起始的细胞接种密度不可过高;而在利用划痕实验 (wound-healing) 鉴定细胞迁移调控因子的筛选实验中 (Wang et al., 2019),需要保证划痕时细胞密度达到90%-100%,以排除细胞增殖对细胞迁移表型的影响。第二,不同细胞密度对转染试剂的耐受程度。转染试剂往往存在一定的细胞毒性,尤其在细胞密度过低时毒性更加显著。因此,在符合生物学表型对细胞密度要求的前提下,可尽量增加细胞接种数目,以降低转染毒性。
转染试剂 转染试剂的优化主要涉及转染试剂种类和用量。不同细胞类型适用的转染试剂种类不同。我们常用的siRNA转染试剂包括DharmaFECT及Lipofectamin RNAiMAX,均属于脂质体类转染试剂。每孔转染试剂的用量需要同时考虑转染效率、转染毒性及高通量筛选的成本。提高转染试剂的用量可以部分程度上提高转染效率,但同时会增加转染毒性及筛选成本。因此,需要综合考虑转染效率和转染毒性,在保证转染效率的情况下,选用尽可能低浓度的转染试剂。转染孔的细胞密度或细胞活力保持在无转染试剂对照孔的80%以上,一般被认为是转染毒性可接受的条件。
转染时间及siRNA浓度 我们利用Dharmacon公司的全基因组siRNA文库开展RNAi筛选时,siRNA的工作浓度一般选择20 nM,转染后48-96 h开展检测。转染时长的确定要同时考虑siRNA下调靶基因mRNA水平到靶基因蛋白水平实现下调的时间,以及所检测表型对时长的要求。若筛选体系有已知的阳性基因,可根据阳性基因siRNA出现表型的时长确定筛选体系的时长。
反式转染是高通量siRNA筛选的主要转染方式,下文重点介绍反式转染的条件优化方法。若反式转染效率不高的细胞,可开展顺式转染条件的优化,需要优化的因素及孔位排布设计与反式转染类似。
优化转染条件我们一般使用转染指示剂TOX,该siRNA进入绝大多数种类的细胞后会导致细胞死亡。若所用细胞对TOX不敏感,可选用带荧光的siRNA,通过观察进入细胞内的siRNA的荧光强度来判断转染效率。下文以TOX作为转染指示剂为例介绍反式转染优化方法。
材料与试剂
仪器设备
实验步骤
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